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在生物醫學領域，藥物研發始終是一場與時間賽跑、與病魔較量的艱苦征程。近年來，新藥研發的步伐逐漸放緩，從1991-2000年21個主要國家發現367種新藥，到2001-2010年降至251種，進入臨床試驗的新藥數量也越來越少，研發周期越來越長[1,2]。這背后的原因復雜多樣，其中藥物研發過程中化學合成與生物篩選環節的分離和不兼容，成為了阻礙新藥研發的關鍵因素。傳統的有機合成方法不僅耗時耗力，且合成過程中大量使用的有機溶劑和嚴苛條件，與生物篩選所需的溫和水性環境及小型化、平行化要求格格不入。不過，一

基于 T 細胞的免疫療法需要獲取大量的 T 細胞。從患者體內分離出的 T 細胞需要在體外進行激活和擴增處理，然后重新注入患者體內以對抗癌細胞。本研究旨在通過引入一種新型細胞培養方法來提高 96 孔板中人類 T 細胞的激活水平。研究結果表明，C.BIRD 細胞培養方法提高了人類 T 細胞的激活水平，但未引起不良激活反應。本研究展示了通過加速工藝開發流程來改進基于 T 細胞的免疫療法研究的巨大潛力。

在生物學，便攜式DNA測序，無標記單分子分析和納米醫學方面，膜納米孔都體現了其重要的應用價值。傳統的物質運輸，其依賴于膜上數納米寬的桶狀通道，但是科技發展的需求，需要在形狀上可調控的，更加寬的納米通道，以適應更廣泛的應用。而在天然狀態下，并不存在這種類的納米孔。利用蛋白合成該類型的納米通道，也具有極大的挑戰性。本文介紹了利用DNA進行上述結構可調和功能應用多樣化的膜納米孔的設計。該設計將成束的DNA雙鏈制備成構成膜孔的亞單位，并逐步組裝成形狀上可調節的完整性膜孔，該孔的寬度可達幾十納米。用于識別

使用CRISPR基因組編輯技術能夠快速生產患者或健康對照的誘導多能干細胞（iPSC），極大地加速了體外疾病模型系統的產生，用于研究人類疾病機制。然而，在工作流程中仍然存在實質性的限制。在從患者細胞中衍生iPSCs時，可以使用特定的選擇標準從未被重編程的細胞中分離出多能細胞。分化過程可以通過使用特定的標記物來豐富目標細胞。最后，分選經過CRISPR編輯的單細胞將提高工作流程的效率。在上述的每一個步驟中，都可以使用柔性流式分選儀進行分選，避免對這些敏感細胞造成傷害。

在生物醫學研究領域，藥物研發一直是備受矚目的焦點。傳統的藥物研發主要依賴動物模型，但這種方式存在諸多問題。動物模型難以精準模擬人體對藥物的反應，在毒理學和病理生理學方面的差異尤為明顯，導致大量藥物在臨床試驗階段失敗，耗費了大量的時間、資金和人力。據統計，新藥臨床試驗往往需要10-15年，成本高昂，且多數臨床候選藥物因安全性、藥代動力學特性和療效不佳等問題而夭折[1,2]。?與此同時，傳統的二維（2D）細胞培養雖然應用廣泛，但它無法真實反映體內復雜的細胞微環境，在預測臨床試驗結果方面表現欠佳[3]

在腫瘤研究和精準醫療領域，腫瘤類器官（如腫瘤球體）作為一種高度仿生的體外模型，正逐漸成為基礎研究、藥物開發和個性化醫療的重要工具。然而，傳統的腫瘤球體培養方法存在諸多局限性，例如操作復雜、成本高昂、細胞需求量大以及難以實現高通通量篩選等。本篇提出了一種基于滴液微陣列（Droplet Microarray）平臺的創新方法，結合I.DOT非接觸式移液技術，實現了腫瘤球體的高效培養和藥物篩選。